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第三军医大学 硕士学位论文 重庆市水环境中抗生素污染与微生物抗生素耐药性研究 姓名:刘小云 申请学位级别:硕士 专业:劳动卫生与环境卫生学 指导教师:舒为群

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TC OTC CTC SPE
Tetracyline Oxytetracyclin

中文全称 四环素 氧四环素 氯四环素 固相萃取


liquid chromatography

Chlomtetracycline


SoLd phase extraction High performance

高效液相色谱,质谱联用技术

coupled with mass spectrometry ARA

抗生素耐药性分析 抗生素多重耐药


AGP STP PEN AM[P CEF

multiple antibiotics resistance microbial


抗菌素促生长剂 污水处理厂 青霉素 氨苄青霉素 头孢他啶 庆大霉素 丁胺卡那霉素 红霉索 链霉素 环丙沙星

antimicrobial growth promoter


sewage treatment plant penicillin ampicillin ceftazidime

gentamicin,gentamycin


amikacin erythromycin streptomycin ciprofloxacin Ofloxacin norfloxacin
C中 OFL NOR ERA PEC AOP

氧氟沙星 诺氟沙星 环境危险性评价

environmental risk assessment


predicted environmental concentration

oxiation process

constructed

wetlands plant

water treatment

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the Antibiotic Pollution and Antibiotic

Resistance in Aquatic Environment in Chongqing

the pharmaceutical pollution in the aquatic environment are getting

more and more

conceHl in developed countries such as

Germany,Denmark,Switzerland

and America

with their rapidly increased usages in human and animals and also the rapid

development of analytical methods in

environment in

years.Present studies showed

that most pharmaceuticals are

fully metabolised in

human and animal bodies.髓e

their pharmaceutically active metabolites will be discharged with the

effluent from pharmaceutical

and then influx into the municipal sewage planL

treatment plant and hospital


agricultural field with with the effluent

manure.These compounds

finally reach the aquatic

environment

rainfall events respectively.Antibiotic pollutant shows to be the most

important class in these newly emerged chemical


antibiotics

pollutants.ne

adverse effects of the

the environment caused by the unreasonable prescription of antibiotics for

huge profits in medicinal operations and abuse of antibiotics to promote growth of

in agriculture

emerging.Repots from Germany,Denmark,Switzerland and America

showed that several groups of effluenL sewage treatment water the

antibiotics

in different concentrations in hospital

effluent,active sludge,aquaculture

environment,surface


at low level

water.11le most possible effects of

antibiotics

aquatic environment are

long―term toxicity

creatures by the persistent antibiotic exposnre

and the increase of

resistance of the

flora due to the selective pressure.

latter seems to be more relevant to human health.Antibiotic resistance in water

suspected to have resistance factors

significance:Resistance

bacterial in water

transferred to human

bedy by several ways

of infectious diseases more difficult,antibiotic resistant

analysis(ARA)is

of the main

methods for the recently developed


water. The first part of

technologies?-??microbial

tracking(MST)in

our research

primary investigation

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with the purpose of providing basic data for further deep study and pollution in Chongqing dynamic monitoring in the city.The aim of the second part involved revealing the adverse

environment effect caused by the antibiotic abuse in human

and animals

in Chongqing and

clue for researches

by primarily investigate the bacteria

resistance in different water bodies using

thermotolerant coliform

indicator.In the third part,we located the antibiotic resistant

the plasmid profile of all isolates

and primarily

determinants. effluent,secondary effluent

Methods:Samples effluent

of influent,primary

from 4 hospitals,source water from 5 water treatment from

plants(WTP)and

downstream of

slaughterhouse

raising livestock and poultry

collected.The

antibiotics

Oxytetracycline,Tetracycline

Chlortetracycline.Solid phase 幻be determined in the

extraction(SPE)was

used to concentrate the compounds that HLB

samples.Preconditioned

SAX(500mg/6m1)and

r500med6m1)

cartridges were equipped in cartridge at

and samples were siphoned using vacuum throrIgh each

flow―rate of 5 ml/min.After extraction,the HLB cartridges were rinsed with

citrate buffer solution and 2ml were evaporated to

O.1M potassium acetate.and then

eluted with

methan01.Elutes

dryness under nitrogen,and then re-dissolved

with 150 identify

1 LC mobile phase A and stored at一20"C for the tetracycline

detection.HPLC/MS

was used to

and quantitate

antibiotics.The antibiotics

were separated using

LC gradient with the A f10

mM ammonium formate

water/methanol

formic acid、and B(IO

ammonium formate with 1.O%formic acid in MeOH)mobile

3.0×150 tuba

Luna C18(Phenonomenexl

with 3 u m packing. monitoring

Individual identified

selected―ion

using retention times

quantifying

confirming ions,quantitated using the ratio of the area of the base―peak ion of the analyte


the area of the

ion of the internal

Water samples for

ARA included surface water polluted by hospital effluent,surface

water from downstream of slauIghterhouse

raising livestock and poultry,influent and spring

and effluent from


STP,source water from

water.Thermotolerant


according to the

isolated using

filter method with

certificated by USEPA.Isolates were

API Lab Plus system.

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susceptibility

tests(AST)were performed

Kirby―Bauer disc

method recommended by NCCLS.The most frequently used 10 antibiotics used in human

penicillin,ampicillin,ceftazidime,gentamicin,amikacin,erythromycin,

streptomycin,ciprofloxacin,Ofloxacin and norfloxacin were involved in the test.Plasmid


DNA minipreparation of all isolates were performed using alkaline lysis.Then.plasmid

molecular size was separated by agarose gel electrophoresis(AGE),photographed by


Bin-Rad gel doe2000.At last,the molecular size was evaluated with
Results:1.Oxytetracycline,Tetracycline 14 water

Chlorotetracycline were detected in the


were found to occur in 8

sampmles from

5 locations.One

more Tetracyclines

at 0.015~0.214 u

g/I..Chlortetracycline was the most commonly detected

sample of influent from the STP was

to contain all the three TCs.

2.0f the 162 isolates of thermotolerant

different types of water

bodies,156(96.3%)were

E coli,5 belonged

to Klebsiella

anzonae.E coli was the predominant strains of the all isolates.All isolates were resistant


to three or

more antibiotics except three strains isolated from spring,which were resistant

and erythromycin;the

incidence of multiple

antibiotics resistance(MAR、was


the test.The

98.1%.15(9.3%)isolates


incidence of resistant

were resistant to all the ten strains

antibiotics involved in

penicillin,erythromycin,streptomycin,ofloxacin,

ciprofloxacin,norfloxacin,gentamicin,ceftazidime,ampicillin


Resistant rates

and amikacin

99.4%,85.2%,74.5%,56.8%,56.2%,47.5%,42.O%,33.3%and 22.2%respectively.


ofloxacin,norfloxacin,gentamicin,amikacin and streptomycin of isolates

from different types of

significantly different(P<0.005).Comparisons

isolates from different water bodies indicated that tlleir resistant rates to differ from each

antibiotics significantly

other(P<o.01250),except the and

WTP and surface water

of agricultural watershed.Isolates from influent

effluent of

significant

difference in resistance

rate(P>0.01250).


size of 0.90―158.83Kb

3.Plasmids of 92

isolates(56.8%)with the

and quantity

were isolated,81 kinds of plasmid profiles were resistant to three

isolates free of plasmids were

more antibiotics.the other three were resistant

erythromycin.11le isolates that had the

plasmid profiles

all different in

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resistance patterns.There was

relativity between the plasmid profiles and resistance


Conclusion:1.SPE

and HPLC/MS

be used in dynamic monitoring of

micropollutant in aquatic envionment in Chongqing. 2.Antibiotics were found to widely necessary to practise basis of a thorough

in aquatic envionment in Chongqing.It is

longterm monitoring for antibiotic


and more detailed data

micropollutant


consumption.

in the area

3.Antibiotic

resistance in aquatic environment in Chongqing widely exists,however

is unknown and needs further deep study.

4.Resistant

ofloxacin,norfloxacin,gentamiein,amikacin and streptomycin of

from different types of

significantly

different.These

antibiotics

in the further research

analyzing the antibiotic

resistance in establish

thermotolerant coliform from different hosts and aquatic environment


database,providing basic studyfortheARAresearch

amethodofMSTin.Chongqing.

5.It may be necessary tO add ARA to the indices of water quNity monitoring for STP effluent,hospital effluent

thermotolerant

environment

bacterial is not mainly

induced by plasmid.Plasmid profile bacterial profiles.

analysis may

proper method for distinguishing

in aquatic environment in Chongqing due to the

diversity in plasmid

Keywords:Aquatic environment,Antibiotic

pollution,Tetracycline,SPE,HPLC/MS,

Thermotolerant coliform

bacterial,Plasmid profde

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重庆市水环境中抗生素污染与微生物抗生素耐药性研究

随着人畜药物使用量的剧增和环境分析测试技术的快速发展,水环境中药物污染 研究近年在德国、丹麦、瑞士和美国等发达国家受到了前所未有的关注。现有研究表 明:多数药物在人和动物机体内都不能够被完全代谢,多以原形和活性代谢产物的形 式通过粪便排到体外。这些物质最终会通过医院污水、城市生活污水、牲畜粪便及医 药工业废水等多种途径进入水环境造成污染。在水环境的药物污染中,抗生素污染是 显得格外重要的一类。医药行业为牟取暴利而不合理使用抗生素、畜牧水产养殖业为 增产而大量使用抗生素的现象使得抗生素对生态环境的负面作用正逐渐显现。德国、 瑞士、丹麦和美国等国先后有人报道在医院污水、污水处理厂污水和活性污泥、水产 养殖厂水体和底泥、地表水和地下水等水体中检出多类不同浓度的抗生素。水环境抗 生素污染最有可能产生的效应是其持续低水平的暴露对水生生物的远期毒性作用和对 其微生物群落产生的抗生素耐药性选择压力,后者与人类健康的关系更为密切。水环 境微生物耐药性卫生学意义重大:耐药微生物及耐药因子可经多途径侵入机体,将耐 药性传递给体内致病菌,加大感染性疾病的治疗难度;抗生素耐药谱分析(antibiotic


analysis,ARA)是近年发展并得到应用的水污染的微生物源追踪(microbial

tracking,MST)技术的主要研究方法之一。

本课题第一部分以地处三峡库区的重庆市水环境为研究对象,对水环境中的抗生 素污染进行初步探索,为今后的深入研究和动态监测提供基础。第二部分以耐热性大 肠菌群(亦称为粪大肠菌群)为指示菌,对重庆市多种水体中微生物对十种常用抗生 素的耐药性进行了初步调查研究,并为在重庆市以ARA为手段进行MST研究提供了 线索。第三部分对所有分离的耐热性大肠菌群的质粒谱进行分析,对菌株的多重耐药 性决定因子进行初步定位。 实验方法:采集水样:采集唐家桥污水处理厂进水、一级处理污水和二级处理污 水,西南医院、324医院、肿瘤医院和新桥医院污水处理站出水,沙坪坝水厂、渝中 区水厂、江南水厂、和尚山水厂和西南制药厂水厂水源水,屠宰场下游地表水和畜禽 养殖厂下游地表水水样。确定受试抗生素为:氧四环素(Oxytetracycline)、四环素 (Tetracycline)和氯四环素(Chlortetracycline)。固相萃取(SPE,solid phase extraction):经

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预处理的SAX(500mg/6m1)和HLB(500mg/6m1)固相萃取小柱串联过水样,后者用柠檬 酸缓冲液和冲洗后在氮气流下吹干,甲醇洗脱。洗脱液经氮气吹干后用100u l流动相 A定容,一20℃储存备测。用HPLC/MS对各水样中经SPE所得富集产物中的四环素 进行分析测试。色谱柱为Phenonomenex

C18(150×3.0衄,3

mbl甲酸铵、0.3%甲酸和10%甲醇的水溶液)和流动相B(含10 m/Vl甲酸铵、1.0%

甲酸的甲醇溶液)进行梯度洗脱,分离受试化合物。离子化采用电喷雾阳离子模式 (EsI(+)),监测方法为选择性离子监测(SIM)。四环素的鉴定以保留时间、定量离 子与确认离子(1或2种)的比值为依据,其定量通过分析物与内标物(Simatone)的基


峰离子面积比值来计算。

以耐热性大肠菌群作为指示菌分析重庆市水环境中微生物对人畜常用十种抗生索 的耐药性并小量制备质粒DNA进行质粒谱分析。采集的水样有:受医院污水污染地 表水样,屠宰场下游与畜禽养殖场下游地表水样,污水处理厂进水与出水、嘉陵江地


表水,歌乐山山顶泉水。富集分离并鉴定菌株:用经美国国家环保局认证的滤膜法对

各水样中耐热性大肠菌群进行富集分离,并用API

Plus微生物分析系统进行菌种

鉴定。抗生素敏感性试验:采用美国临床实验室标准委员会(NccLs 1997版)推荐 的Kirby.Bauer琼脂扩散法,选择人畜最常用的青霉素、氨苄青霉素、头孢他啶、庆 大霉素、丁胺卡那霉素、红霉素、链霉素、环丙沙星、氧氟沙星和诺氟沙星等lO种抗 生素进行药物敏感性试验。分析菌株质粒谱:用碱裂解法小量制备各分离菌株的质粒


DNA,经O.7%琼脂糖凝胶电泳后用Quantity one系统估算其大小,分析菌株质粒谱。 实验结果:1.从重庆市5种水体的14个水样中检出浓度为0.015~0.214

氯四环素、氧四环素和四环素。其中有8个水样至少检测到1种四环素,检出最多的


是测到3种四环素的污水处理厂进水。

2.从7种不同水体分离得到的162株耐热大肠杆菌中156株(96.3%)为埃希氏大 肠杆菌,5株为克雷伯氏菌,1株为亚利桑那沙门氏菌,埃希氏大肠杆菌为优势菌。除 3株分离自山泉水的菌仅对青霉素和红霉素两种抗生素耐药外,其它菌株都对3种及3 种以上抗生素耐药,多重耐药率达到98.1%,对所选十种抗生素都耐受的菌为15株


(9.3%)。十种抗生素耐药率依次为:青霉素lOO%,红霉素99.4%,链霉素85.2%,

氧氟沙星74.5%,环丙沙星56.8%,诺氟沙星56.2%,庆大霉素47.5%,头孢他啶42.0%, 氨苄青霉素33.3%,丁胺卡那霉素22.2%。不同水体分离菌株对氧氟沙星、诺氟沙星、 庆大霉素、丁胺卡那霉素、链霉素等5种抗生素的耐药率有显著性的差异(P<O.005)。 不同水体的分离株耐药率两两比较发现:除嘉陵江地表水和屠宰场、畜禽养殖场下游

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地表水外,其它不同水体间微生物对1~5种抗生素的耐药率具有显著性差异 (P<0.01250)。污水处理厂进水和出水分离菌株的抗生素耐药率无显著性差异


(P>0.01250)。

3.162株分离菌株中有92株(56.8%)提取到大小为O.90~158.83Kb、数量为1~ 6个的质粒,有81种质粒谱型。70株(43.2%)未提取到质粒的细菌中对2种抗生素耐 受的有3株,其余67株均对3种及3种以上抗生素耐受(多重耐药);具有相同质粒 谱型的菌株耐药谱都不相同;未发现质粒数量的多少与抗生素耐受种类多少间有明显

结论与展望:1.SPE与HPLC/MS适于对重庆市水环境中抗生素污染进行动态监 测。2.重庆市多种水体中普遍存在痕量水平的四环素类抗生素,应进行周密布点,选 择出具代表性的抗生素,对重庆市水环境中抗生素污染进行长期监测。3.重庆市水环 境中微生物的抗生素耐药性已普遍存在,形成原因有待深入研究。4.不同水体分离的 耐热性大肠菌群对氧氟沙星、诺氟沙星、庆大霉素、丁胺卡那霉素和链霉素的耐药性 有显著性差异,可以这五种抗生素为代表进一步研究重庆地区耐热大肠菌群各宿主(如 人、各种家禽家畜)粪便及各种水体中耐热性大肠菌群的抗生素耐药性并建立相应数 据库,为以ARA进行微生物污染源追踪的可行性研究奠定基础。5.在重庆市医院污水、


污水处理厂出水和嘉陵江地表水的水质监测项目中加入微生物耐药性指标具有重要意

义。6.未发现耐热性大肠菌群质粒谱与耐药谱间有明显相关性,推测菌株多重耐药性 可能不是质粒DNA介导:各菌株质粒谱具有高多态型,质粒谱分析不能用于区分重 庆市水环境中微生物污染来源。

关键词:水环境:抗生素污染;固相萃取;高效液相色谱,质谱联用技术;微生 物耐药性;耐热性大肠菌群;质粒谱

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重庆市水环境中抗生素污染与微生物抗生素耐药性研究

过去近四十年中,人们对环境化学污染的关注仅限于传统的优先污染物,尤其是 在环境中持续存在且具急性毒性和致癌性的杀虫剂和工业副产物。对包括处方药、生 物制剂和诊断用药在内的一大类具有生物活性、可能造成生态环境污染的医用、兽用 药物的研究很少…。目前还只有德国、瑞士、丹麦等欧洲国家及美国等少数发达国家 对医用和畜用药物的环境行为进行了一些初步研究。他们的研究表明:多数药物在人


和动物机体内都不能够被完全代谢,多以原形和活性代谢产物的形式通过粪便排到体

外。这些物质最终会通过医院污水、城市生活污水、牲畜粪便及医药工业废水等多种


途径进入水环境造成污染(图1)【2J。

Figure 1.Sources。pathways and sinks of pharmaceuticals

图1水环境中药物污染源与污染途径

城市生活污水大多进.K--级污水处理厂进行处理,处理工艺以传统的活性污泥法 最为常用。研究表明,现行的污水处理技术很难彻底清除医用药物,未被清除的具生

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物活性的药物会随出厂污水渗入地下水或汇入地表水造成污染【3】。 医院污水是一种极其复杂的体系。除了与城市污水相同种类的污染物外,医院污 水中还含有高浓度、难降解的处方药、生物制剂、消毒剂、重金属离子和放射性同位 索等特殊化学污染物。现行的医院污水处理工艺主要利用生物氧化和化学氧化等常规 方法,对医用药物的降解效率低,处理后污水中仍有残留药物进入外环境水体。有调 查显示,国内有相当大比例的医院污水处理系统不能维持正常运转,污水未经处理就 被排入城市污水或直接排放到地表水体造成污染14.5)。 畜牧养殖厂排出的动物粪便中同样有兽用药物及其代谢产物的残留。这些粪便仅 通过简单的堆肥处理就被用作农田粪肥,其中的兽药将渗透到地下水或经地表径流进 入地表水。 在药物污染中,抗生索污染是显得格外重要的一类。自二十世纪40年代青霉素问 世来,已有百余种抗生素被相继开发使用,它们在治疗感染性疾病方面发挥了巨大作用, 有效地保障了人类的生命健康。此外,抗生素还被大量用于畜牧业和水产养殖业防治 感染性疾病,并用作抗菌生长促进剂(antimicrobial growthpromoter,AGP)j/I快动物的生 长,促进了食品工业的发展。然而,医药行业为牟取暴利而不合理使用抗生素、畜牧 水产养殖业为增产而大量使用抗生素的现象使得抗生素对人类和生态环境的负面作用 也逐渐开始显现。有统计数据显示:欧洲1996年抗生素的使用总量为10200吨,其中 约50%用作兽药和AGP:1999年其用量上升至13288吨,其中35%用于动物;美国 2000年抗生素的用量约为16200吨,约70%用于畜牧水产养殖业;全球抗生素年均使


用总量约为100000~200000吨【6】。

同多数药物一样,抗生素不能被人和动物机体完全代谢,它们大多以原形和活性 代谢产物随粪便排入污水,而现行的污水处理技术又不能够彻底清除残留的抗生素, 未被清除的部分将对水环境造成污染‘7‘1 01。近年来,随着分析测试技术的快速发展及 抗生素使用量的不断增加,在德国、瑞士、丹麦等欧洲国家和美国先后有人在医院污 水、污水处理厂污水和活性污泥、水产养殖厂水体和底泥、地表水和地下水等水体中 检出多类不同浓度的抗生素‘7。51。 因受检测技术的限制,水环境抗生素污染的研究目前仅在少数发达国家得到开展, 有关资料还极为缺乏,其对人类和生态环境带来的负面效应也未能确定。美国FDA 和欧盟OECD分别于1977年和1995年开始进行药物注册前环境危险性评价


(environmental

assessment,ERA),并规定药物进入ERA程序的预期环境浓度 concentration,PEC)域值分别为lpg/L和O.Oll-Lg/L[t6-17)o收

(predicted environmental

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集足够的环境中药物暴露水平资料是进行科学的环境危险性评价的第一步【1引。我国是 抗生素生产和消费大国。据统计,1996年和1997年全国大环内酯类产量分别为591.4 和931.6吨,1998年各类抗生素生产总量为3万多吨,1999年喹诺酮类抗生素的用量 为2548吨n9.20】。从我国抗生素的使用情况和污水处理现状来看,很有必要对水环境中 抗生素污染水平进行调查研究和长期的动态监测,为深入进行抗生素环境危险性评价 提供足够的数据支持。然而,目前国内在该领域还没有研究报道。


重庆市地处嘉陵江和长江汇合处,水资源丰富,人口众多(近3100万),医疗卫 生事业和医用制药行业较为发达,共有西药制药企业32个(其中城区占24个),医

疗卫生机构4500多个。同时,兽药产业和畜禽水产养殖业在该地区业也较发达。医院


污水、制药厂排放废水、居民生活污水和畜禽水产养殖厂废水都可能成为该地区水环

境的抗生素污染源。举世瞩目的三峡工程将给重庆特别是三峡库区水环境带来广泛而 深远的影响,库区形成后的水质状况受各级政府和广大群众的密切关注。本课题第一 部分即以地处三峡库区的重庆市水环境为研究对象,用近年得到快速发展的固相萃取


(solid phase

extraction,SPE)和高效液相色谱与质谱联用技术(high

performance liquid

chromatography coupled with mass

spectrometry,HPLC/MS)对水环境中的抗生素污染进

行初步探索,为该地区水环境抗生素污染长期动态监测提供基础。 水环境抗生素污染最有可能产生的效应是其持续的暴露对水生生物的毒性作用及 对微生物群落产生的抗生素耐药性选择压力,后者与人类健康的关系更为密切[2,21-241。 水环境中微生物耐药并非新兴话题,早在1976年Cooke就对自然水环境中大肠杆菌 和粪性大肠菌的耐药性进行了报道伫51。近年来,随着抗生素用量和种类的不断增加, 对水环境中微生物抗生素耐药现象及其形成机制的研究也受到了前所未有的关注,有 关报道层出不穷[22,23,26-50】。研究显示:人和动物体内耐药菌或耐药因子向水环境的扩 散及水环境中低浓度的抗生素对菌群产生的耐药性选择性压力都可能是微生物耐药性 的形成原因口”。水环境微生物耐药性卫生学意义重大。耐药微生物及耐药因子可经多 途径侵入机体,将耐药性传递给体内致病菌,加大感染性疾病的治疗难度[51-53];抗生


素耐药谱分析(antibiotic resistant analysis,ARA)是近年发展并得到应用的水污染的 微生物源追踪(microbial

tracking,MST)技术的主要研究方法之一【3648?5¨8”。

然而,对水环境微生物耐药性的研究在国内还未见报道。本课题第二、三部分以耐热 性大肠菌群为指示菌,对重庆市多种水体中微生物耐药谱和质粒谱进行了初步调查研 究,试图揭示该地区人和动物抗生素滥用所造成的负面效应,并为在以ARA为手段 进行MST研究提供线索。

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第一部分重庆市水环境抗生素污染研究


抗生素对水环境造成的污染近年在欧美一些国家已受到关注,在我国还没有相关 研究报道。本研究利用近年得到快速发展的SPE与HPLC/NIS技术,对重庆市医院污 水、污水处理厂污水、农业流域地表水和两江地表水等水环境中3种最常用的四环素 类抗生素污染情况进行了初步研究。

一、主要仪器与设备 1.VisiprepTmDL固相萃取器

美国Supclco 美国Agilent

HPLC与1946B MS

3.无油真空泵(HD.25) 4.氮吹仪(MTN.2800)


5.pH计(PHS.P) 6.电子天平(BSll0S) 7.高温烤箱(CSl01II)
天津 上海大中分析 德国Sartorius 江苏
1.SAX柱(500 mg/6ml,美国Isolute)

2.HLB固相萃取柱(500mg/6ml,美国Waters)


4.甲醇(色谱纯) 5.超纯水:mili―Q系统制备 6.40%硫酸 7.99.999%氮气 8.醋酸钾(分析纯) 9.10mM甲酸铵(色谱纯) 10.Na2EDTA(分析纯) 11.1.23mg/L四环素甲醇溶液(美国,Sigma) 12.1.23mg/L氧四环素甲醇溶液(美国,Sigma)

13.1.23mg/L氯四环素甲醇溶液(美国,Sigma)


14.1.23mg/L Simatone溶液(美国,Sigma)

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mg/L甲基氯环素溶液(美国,Sigma)

17.O.04M柠檬酸缓冲液 三、抗生素使用情况调查与检测种类确定 统计分析西南地区医院用药分析与监测系统(中国药房杂志社信息中心内部资料, 第三军医大学第一附属医院药剂科提供)2003年全年各类药品中抗生素类药物的按日 剂量数(DDDs)排序及通用名按日剂量数(DDDs)排序‘591,结果见表1-1与表1-2。

表1-1西南地区2003年各类药品按日剂量数(DDDs)排序100名内抗生素类药品

表l一2西南地区2003年药品通用名按日剂量数(DDDs)排序100名内抗生素 排序


5 10 75 95 100

抗生素通用名 青霉素G钠 甲硝哒唑 诺氟沙星 司帕沙星

查阅相关文献,了解到重庆市近年医院抗生素使用情况。根据金蜀蓉等人的报道, 重庆市1998年至2002年间用量居前20位的药品中,抗感染药物占相当大的比例。 在喹诺酮类药物中,1998年只有氧氟沙星和环丙沙星进入前20位,而到1999年、2000

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年,环丙沙星和氧氟沙星被逐步排出前20位以外,取而代之的是依诺沙星和左旋氧 氟沙星。大环内酯类中罗红霉素和阿奇霉素使用最为广泛【60t6”。 对九龙坡区畜禽养殖厂抗生素使用情况进行走访调查发现,畜禽用抗生素以四环 素类、磺胺嘧啶类、氟喹诺酮类、丁胺卡那霉素、链霉素、红霉素为主。其中四环素 类抗生素是最常用的促生长剂之一。 综合以上调查结果与现有的HPLC/MS检测方法所能检测的抗生素种类,确定对 水环境中氧四环素(Oxytetracycline)、四环素(Tetracycline)和氯四环素 (Chlortetracycline)的污染进行初步研究。

表1.3各采样点污水(水)处理工艺流程 采样点 污水(水)处理工艺流程 进水一粗格栅一进水泵房一细格栅一曝气沉砂池一计量槽一初 唐家桥污水处理厂 沉池一曝气池一二沉池一出水 西南医院、324医院、肿瘤医 院污水处理站 医院污水一化粪池一格栅过滤池过滤一沉淀池一污水消毒池次 氯酸钠消毒一进入市政污水排放系统 医院污水一化粪池一格栅过滤池过滤一沉淀池一污水消毒池次 新桥医院污水处理站 氯酸钠消毒一排入地表水体 沙坪坝水厂、渝中区水厂 江南水厂 江水一沉沙池一加碱铝一沉淀池一加聚合氯化铁一过滤池一加 液氯一清水池一出厂水 江水一前加碱铝一预沉一后加碱铝一沉淀池一前加氯一 和尚山水厂 过滤池一后加氯一清水池一出厂水 江水一沉沙池一加聚合硫酸铁一反应池一缓冲池一沉淀池一过 西南制药厂水厂 滤一加液氯一清水池一出厂水 屠宰场下游地表水 畜禽养殖厂下游地表水 未经处理,直接进入农户使用 未经处理,直接进入农户使用

准备器皿:为防止四环素和蛋白、硅醇基结合,并与金属离子形成螯合物,所有 玻璃器皿须经重铬酸钾洗液浸泡24 h、超纯水清洗后经250"C烤2 h,并加入2.5ml饱 和的Na2EDTA甲醇溶液进行涮洗‘62】。采样瓶为500ml棕色玻璃瓶,采样前加入5ml 5M 醋酸铵。

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采集样本:于2004年10月用经处理的500ml棕色玻璃瓶采集重庆市主城区1家


城市污水处理厂进厂污水、一级处理污水、二级处理出厂污水和4家医院(西南医院、

新桥医院、324医院、肿瘤医院)污水处理站排放污水250ml,5家自来水厂(沙坪坝 水厂、渝中区水厂、江南水厂、和尚山水厂和西南制药厂水厂)水源水,农业流域屠 宰场下游地表水和畜禽养殖场下游地表水各500ml。各样本采集两份平行样。水样置 于带有冰块的保温箱运回实验室,立即用O.45


的Na2EDTA后置于4℃保存备用19,63]。

m孔径醋酸纤维滤膜过滤后添加1.39

各城市污水处理厂污水、医院污水处理站污水、嘉陵江地表水和农业地区地表水 处理工艺流程如表1.3。

图1固相萃取流程图 在固相萃取前,水样(123m1)和分析物对照(123m1)中均加入40%硫酸75

m,Ct,甲基氯环素(替代标准)溶液200 u l。分析物对照为添加1.23 mg/t,各分析物

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甲醇溶液200 la l的超纯水。用甲醇2ml和O.04M柠檬酸缓冲液(pH 4.7)2ml将SAX

和HLB固相萃取小柱进行预处理后,将SAX置于HLB上串联使用。前者用于去除带 阴离子的腐殖质等干扰物,后者保留抗生素类物质。水样与对照过柱,HLB小柱以 O.04M柠檬酸缓冲液(pH 4.7)2ml和O.IM的醋酸钾2ml冲洗并在99.999%氮气流下吹


干,甲醇2ml洗脱2次‘¨6”,洗脱液滴入盛有100|l l浓度为1.23mg/L内标(sima00ne) 的试管中,氮气吹干,加入150u l流动相A(见分析测试部分),一20℃储存备测。 五、分析测试 用HPLC/MS对各水样中经SPE所得富集产物中的四环素进行分析测试。 (一)液相色谱条件 1.色谱柱:PhenonomenexLunaClB(150×3.0inlll,311m)。 2.流动相 流动相A:浓度为lOmM甲酸铵溶液,溶剂为90:10(v/v)的甲醇和水,含O.3% 甲酸。 流动相B:浓度为lOmM的甲酸铵甲醇溶液,含1.0%甲酸。 3.总流速:0.6ml/min 4.进样量:20ul 5.柱温:35℃ 6.梯度洗脱(表1.4)
表l_4梯度洗脱流动相比例

注:各次检测间以初始条件平衡色谱柱5rain。

(二)质谱条件 1.电离方式:电喷雾离子化源(EsD,正离子检测。

2.监测方法:选择性离子监测(sm),各化合物的质子化分子离子【M+H】+和确认


离子见表1--5。 3.参数设置:喷雾压为30psig,毛细管电压4000V,解离电压100V。

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四环素的鉴定以保留时间、定量离子与确认离子(1或2种)的比值为依据,其 定量通过分析物与内标物(Simatone)基峰离子面积比值来计算。 各分析物以蒸馏水为基质的回收率见表1―6。定量限(Limit ofquantitation,LOQ)


Ion Adduct and Confirming Ions for the

Tetracycline

表1―5四环素分子离子加合物与确认离子(M/Z)

Table 1.6 Recoveries of tetracyclines from 123 mL of Distilled

表1_6四环素以123mL蒸馏水为基质的回收率

Recoveries were the average ofduplicates of0.20,1.0,and 2.0 g/L.

从重庆市5种水体的14个水样中检出氯四环素、氧四环素和四环素,其中8份至 少检测到1种四环素,检出最多的是测到3种四环素的污水处理厂进水,检出浓度为


0.015~0.214

g/L(见表1―7)。

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注:CTC:氯四环素,

OTC:氧四环素,TC:四环素。

四环素类抗生素(TC)为广谱抗生素,主要通过抑制蛋白质合成而产生抑菌作用,


对大多数革兰氏阳性和阴性菌、包括一些耐青霉素菌株均有效。在临床上,它们主要

用于治疗尿路感染和立克次体、衣原体、支原体、弧菌感染等。同时,在集约化动物


养殖场,TC被广泛地用作畜禽渔类促生长剂【64.651。

近年来,抗生素在水环境中的存在被一些发达国家作为一种公共卫生问题日渐关


注。Zhu等人用SPE与HPLC/MS联用技术对美国养殖场废水样中CTC、OTC和TC中进

行检测发现,多数样本至少有1种以上的检出浓度高于3 p g/L,过半的水样中3种四环 素都有检出:检出浓度最高的是CTC,达到12000 u g/L,其次是OTC和TC,达1300p g/d64】。Lindscy用SPE与HPLC/MS对144份地下水和地表水中的6种四环素污染情况进 行研究发现:OTC最常检出,检出浓度为0.07~1.34

g/L;在1份地表水样中检测到O.15

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g/L雕JCTC【65】。

本课题利用SPE与HPLC/MS对重庆市多种水体中四环素类抗生素的污染进行了初 步研究。结果表明,该方法具有灵敏度高、特异性强的特点,适用于检测重庆市水环 境的痕量抗生素。在2份(50%)医院污水样,2份农业流域地表水(100%),STP进水、 一级处理出水和二级处理出水样本各l份(100%),1家自来水厂水源样(20%)中至 少检出1种四环素类抗生素,检出浓度为0.015~0.214

g/L。STP进水样中检出种数最

多。检出率最高的是CTC。畜禽养殖场下游地表水样中的CTC检出浓度最高(O.214ll

g,L)。s盯进水、一级处理出水、二级处理出水中四环素的种类和浓度有逐步减少的


趋势。有研究显示:四环素是很强的螫合剂,对土壤有极强的吸附作用。其中,OTC 的辛醇,水分配系数仅为0.026,而它在活性污泥中的土壤分配系数是1990[651。此次研 究的医院污水处理站出水样中仅有50%检NNo.020~0.027

g/L的四环素、sTP污水中

四环素随处理进程逐步减少,可能与污水处理过程中四环素对污泥的强吸附作用有关。 农业流域,特别是畜禽养殖场下游中样检出浓度远远高于其它水样。可能是由于四环 索类抗生素在农业的使用量较大,也可能与畜禽养殖场粪便中药物未被处理而直接随 粪肥经地表径流进入地表水有关。 四环素类抗生索对光降解作用较为敏感,它们在自然水环境中的浓度可能呈现明 显的地区和季节相关性1671。本研究的5家自来水水源水样中仅1份水样检NNo.015

∥L的CTC。原因可能是:本次采样时间为lO月,江水流速快、重庆市日照充足,江水 对污染物的稀释和光解等自净作用都很强。 受时间和技术条件的限制,本研究仅对重庆市14个采样点进行了1次水样采集,检 测结果的随机性和偶然性在所难免。然而,该研究在国内首次利用近年发展起来的SPE 与HPLC/MS联用技术对水环境中的抗生素污染进行了初步探索,发现重庆市多种水体 中存在不同浓度的四环素类抗生素,为在该地区深入研究水环境中药物污染奠定了基 础。今后的研究应在采样布点上进行周密部署并进行动态监测,寻找水环境中抗生索 污染的时间、空间分部规律,为药物的环境污染效应研究和环境安全性评价累积数据。

一、SPE与HPLC/MS适于对重庆市水环境中抗生素污染进行动态监测。 二、重庆市多种水体中普遍存在痕量水平的四环素类抗生素,应进行周密布点、 选择几种抗生素作代表,对重庆市水环境中抗生素污染进行动态监测。

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第二部分重庆市水环境微生物耐药性研究


抗生素滥用对生态环境所造成的负面效应还鲜为人知。研究表明,环境中抗生素 耐药性细菌的存在和传播不容忽视。水环境中细菌的抗生素耐药性卫生学意义尤为重 大。本研究以重庆市医院污水、污水处理厂污水、屠宰场下游地表水、畜禽养殖场下 游地表水、嘉陵江水和山泉水中耐热性大肠菌群作为指示菌,利用滤膜法对其进行分 离、鉴定,分析其对常用十种抗生素的耐药谱。
1.冷冻恒温振荡器(DHZ.D) 2.超净工作台(LZ一2) 3.水样过滤装置 4.电子天平(BSll0S) 5.API微生物分析系统(API 6.pH计(PHS.P) 7.全自动电热高压蒸汽灭菌器(LDZX一40SBI) 8.电子比浊器

江苏 苏州 日本 德国Sartorius 法国BiosMerieumx


上海申安 法国BiosMerieumx

二、主要试剂及配制 1.枚红酸(rosolic acid)溶液

准确称量19枚红酸(重庆,化玻公司)和0.89氢氧化钠NaOH(重庆,化玻公 司)溶于100ml三蒸水中,置于棕色玻璃瓶在40c保存备用。


2.甲基蓝(methyl blue)溶液

准确称量lg甲基蓝(重庆,化玻公司)溶于lOOml三蒸水在棕色玻璃瓶中4。c


m孔径、47ram直径网格滤膜(美国,Millipore)

4.m―FCAgar培养基 胰蛋白示(Tryptose,英国,Oxoid)10.0 g;聚胨(polypeptone,英国,Oxoid)5.0

酵母提取物3.09;氯化钠5.0 g;乳糖12.5 g:三号胆盐(Bile

No.3)1.5 g:琼脂15.0

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g。各组分加入三蒸水1.0 L充分混匀后加热至沸腾时立即加入枚红酸溶液和甲基蓝溶

液各10ml,沸腾约lmin后移开热源冷却到50。c,用氢氧化钠溶液调节其pH到7.4 后倒入60×15ram培养皿中40C倒置保存备用。 5.平皿计数琼脂培养基 胰胨(Tryptone,英国,Oxoid)5.09,酵母提取物2.59,葡萄糖1.09,琼脂15.Og, 蒸馏水1000ml。121。C高压蒸汽灭菌后pH用NaOH调至7.O±O.1倒入60X 15mm培 养皿中4。C倒置保存备用。


6.半固体(菌株保存)培养基

蛋白胨109;牛肉膏59;NaCI 39;磷酸氢二钠Na2HP04 29;琼脂4.59。各组分 溶入1000ml蒸馏水后分装于10ml试管,每试管分装3ml,121。C高压蒸汽灭菌15min 后40C保存备用。 7.APl20E试剂盒(法国,BiosMerieumx) 8.稀释缓冲液 磷酸缓冲储备液:34.0克KH2P04溶于500ml蒸馏水,用1N的NaOH溶液调节 pH到7.2±0.5,然后再加蒸馏水稀释到1L。 缓冲工作液:1.25ml的磷酸缓冲储备液和50ml的氯化镁溶液(389MgClyL)加


到1L蒸馏水中,分装灭菌备用。

9.普通羊血平板(重庆,庞通) 10.水解酪蛋白(Mueller-Hinton,MH)琼脂平板(英国,Oxoid) 11.十种抗生素药物敏感性试验6.35mm纸片(英国,Oxoid) 12.麦康凯平板培养基(重庆,庞通) 三、水样采集 于2004年11月采集医院污水排放点地表水样与白市驿农业流域地表水(包括屠 宰场污水排放口下游地表水和畜禽养殖地区地表水),2005年3月采集污水处理厂进 厂污水与出厂污水、嘉陵江地表水和歌乐山山顶山泉水(表2―1)。用经200。C高温 干烤2 h后包裹于灭菌牛皮纸袋的500ml棕色采样瓶进行采样。采样按照无菌操作进 行,各水样采集平行样三份,每份采样量500ml。样本置于放有冰块的冷藏箱中运回 实验室4。C保存,6h内进行过滤。

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HEPS:hospital

polluted suface water;AGRI:surface water downstream from slaughterhouse;

AGR2:Surface water downstream from farms raising fivestock and poalty;STPi:influent of sewage treatment

plant;SUR:surface

water from Jialing

river;STPe:effluent

of sewage treatment

Spdng water

四、菌株分离 参照美国《水和废水标准检验法》【691中的滤膜法在6 h内对水样中的耐热大肠菌 群进行检测分离。各水样过滤体积分别为:医院污水排放点地表水和污水处理厂进厂 水0.001ml,污水处理厂出厂水样0.01ml,屠宰场下游地表水0.1ml,畜禽养殖基地地


表水和嘉陵江地表水lml,山泉水100ml。

除山泉水直接过滤外,其它水样在100ml无菌缓冲稀释液中充分混匀后用口径为

him的过滤器和直径47mill、孔径0.45 um的网格滤膜(美国,MiUiporc)过滤。

对每批水样进行过滤时都以100ml灭菌稀释缓冲液作为空白对照。滤膜细菌截留面向

上,以滚动方式置于经m―FC平板(染料组份苯胺蓝替换为甲基蓝)上,于37"C进行

h的复苏培养后转至44.5"C培养19 h。对滤膜上典型蓝色菌落数为20~60的平板上

菌落进行计数,计算耐热大肠菌群平均密度(cfu/100 cm)。用无菌接种针随机挑取各 类形态的蓝色菌落5个用标准计数培养基平板划线接种纯化,纯化菌株接种于半固体 培养基37℃培养24h后置于4"C保存备用。

所有分离菌用APILabPlus微生物分析系统、APl20E试剂盒(法国,BiosMerieumx) 进行菌种鉴定。具体步骤如下。 1.纯化菌株。本次实验将保存在试管内的菌种用灭菌后的接种环挑取少许,采用

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“三线法”接种于普通羊血平板上,置35。C电子恒温孵育箱培养18 h后得到经活化

2.制备菌悬液。打开一安瓿NaCl O.85%(5ha),以灭菌接种针从羊血平板上挑取已 分纯的单个目的菌落至上述无菌盐水中,仔细研匀以达到均一的细菌悬液,然后用电 子比浊器测定菌悬液的浊度,本次实验所有菌悬液必须均调整为O.5麦氏单位。 3.准备试验条。准备一个培养盒,倒入约3ml灭菌蒸馏水于盘凹中。记录菌株资 料于盘的边沿部分。从包装中取出试验条置于盘中。

4.接种试验条。用无菌吸管将细菌悬液充满£竖、迎及至逼L管,避免气泡产生:


其它管仅充满管部(非杯部),避免气泡产生;△旦盟、丛堑、l!基亘、ODC和丛点,则 用无菌矿物油覆盖;盖上培养盖,于35~37℃孵育18~24 h。 5.判读结果。如果葡萄糖阳性并且,或3个以上测定是阳性,加以下试剂观察结果。 TDA测定,加一滴TDA试剂,深褐色为阳性反应;IND测定,加一滴James试剂, 反应立即发生,整个反应管呈现粉红色为阳性;或加一滴吲哚试剂,等2 rain,出现 红色环为阳性反应:VP测定,加1滴VPl和VP2试剂各1滴,等10rain,浅粉或红
色为阳性,如浅粉红色在10b12 rain内出现,判断结果为阴性。取出API 报告单进行记录。

6.鉴定。所得反应的类型以数字化形式记录在报告单,每3个测定为一组,数字


以1、2和4标明,每组中阳性反应以相应的数字相加,由APl20E的20个测定可得

一个7位数,氧化酶反应构成其第21个反应,如阳性则为4。在API 据库中输入所得的7位数字,由数据库根据数字编码给出鉴定结果。

采用美国I临床实验室标准委员会(NCCLS 1997版)推荐的Kirby.Bauer琼脂扩散 法,选择医疗和畜禽养殖最常用的10种抗生素进行药物敏感性试验。抗生素纸片(英 国,Oxoid)种类及其抗生素含量为:青霉素(PEN,10IU/片),氨苄西林(AMP,10

g,片),头孢他啶(CEF,30u g,片),庆大霉素(GM,10It g,片),丁胺卡那霉素

(AMI,30It g,片),红霉素(EM,15It g/片),链霉素(SM,10u g/片),环丙沙星

g/片),氧氟沙星(OFL,5

g/片),诺氟沙星(NOR,5 u g/片)。质控菌

株为埃希氏大肠杆菌ATCC25923(第三军医大学第二附属医院检验科保存菌株),结


果判定参照NCCL2003版【70】。

实验具体步骤如下。 1.接种、活化菌种。将保存在试管内的菌种用灭菌后的接种环挑取少许,采用“三

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线法”接种于普通羊血平板上,置35℃电子恒温孵育箱培养18 h得到经活化后的目 的菌种。 2.制备菌悬液。用灭菌后的接种环从上述平板上挑取已分纯的单个菌落2.3个, 小心地放在约含2ml无菌生理盐水的试管管壁内,缓慢地将细菌碾磨均匀并与无菌生 理盐水充分混匀,即可得到菌悬液,最后用电子比浊器测定菌悬液的浊度,本次实验 所有菌悬液均调整为0.5麦氏单位。 3.接种M.H平板。制备好的菌悬液必须在15 rain内使用。用灭菌的棉拭子蘸取 菌液在管壁上旋转挤压3次,去掉多余的菌液。用该拭子涂布整个M.H培养基表面,

每次将平板旋转60度,最后沿平皿周边绕两圈,保证涂布均匀。

4.贴药敏纸片。待平板上的水分被琼脂完全吸收后用镊子取药敏纸片一片贴在琼


脂平板表面,用镊尖稍稍压平。每张纸片间距不少于24 111113.,纸片中心距平皿边缘不 少于15 mm。直径为90 mm的M―H平板贴5张,贴完纸片后在15 rain内将平板反 转,置于35℃孵箱中培养18―24 h后观察结果。

5.判断结果。孵育18―24 h后,检查每块平板,如果平板划线满意,接种物准确无


误,抑菌圈应为正圆形,菌落应相互融合生长。抑菌环的边缘以细菌明显生长为限,

测量包括纸片在内的完全抑制区域直径。 七、统计学分析


采用SPSS 11.0统计软件包进行数据统计。多个样本率比较采用x2检验,按照检

验水准口=O.005进行分析,P<0.005为差异显著:多个样本率间两两比较采用x2分割


法,按检验水准口’=O.0125分析,P<0.0125为差异显著【7“。

一、耐热大肠菌群检测结果 检测结果显示(表2--2),不同水体中耐热大肠菌群密度有较大差异,菌群密度 排序为HEPs>sTPi>sTPe>AGRl>AGR2>suR>sPR。HEPS、STPi、STPe水体位于人 口密集、排污点固定的主城区,以点源污染为主;AGR2和SPR水体无固定排污点, 主要受地表径流产生的散在性非点源污染影响:AGRl和SUR受到的为混和性污染。

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表2―2不同水样耐热大肠菌群密度与分离菌株数

经鉴定发现,从7种不同水体分离得到的162株耐热大肠杆菌中156株(96.3%) 为埃希氏大肠杆菌,5株为克雷伯氏菌,1株为亚利桑那沙门氏菌(表2--3),埃希氏 大肠杆菌为优势菌,占菌群总数的90%以上,该结果与水环境中耐热大肠菌群的常见


分布‘721基本一致。

表2―3不同水样耐热大肠菌群菌种分布

注:括号中为样本各鉴定菌种占其分离菌株百分比

二、耐热大肠菌群抗生素药物敏感性试验结果

(一)分离菌株耐药性概况 对十种常用抗生素的药物敏感性试验表明,重庆市水环境微生物耐药性普遍存在:

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除了3株分离自山泉水的菌仅对青霉素和红霉素两种抗生素耐药外,其它菌株都对3


种及3种以上抗生素耐药,多重耐药率达到98.1%,对所选十种抗生素都耐受的菌为 15株(9.3%)。十种抗生素耐药率依次为:青霉素100%,红霉素99.4%,链霉素85.2%,

氧氟沙星74.5%,环丙沙星56.8%,诺氟沙星56.2%,庆大霉素47.5%,头孢他啶42.O%, 氨苄青霉索33.3%,丁胺卡那霉素22.2%(表2―4)。各分离菌株的耐药谱见表3―1。 (二)不同水体分离菌耐药率的比较

分离自不同水体的菌株对Off、Nor、GM、Ami、SM的耐药率及对十种受试抗生 素都耐药的菌株比例具有显著性差异,对其它抗生素的耐药率未见显著性差异(图l,


+Off:X2=16.953,P<0.005;Nor:X2=24.138,P<0.005;GM:x2=51.662,P<0.005; Ami:X2=63.877,P<0.005;SM:X2=20.885,P<0.005;Ten:x2=20.177,P<0。005)。

(三)各水体分离菌耐药率的两两比较

1.山泉水与农业流域地表水(包括屠宰场下游与畜禽养殖场下游地表水)分离菌 株比较(SPRVSAGR)

∞吾妻酌∞ 皋;㈣∞踟∞0


cef ery cip off

Antibiotics

图2 SPR与AGR分离菌耐药率比较

山泉水与农业流域地表水分离菌株比较,前者对Off、Nor、GM和Ami的耐药率


显著低于后者,对其它抗生素的耐药率未见显著性差异(?Off:X2-----9.664,P<0.00227; Nor:x2=9.094,P<0.00313;GM:x2=18.892,P<0.00227;Ami:X2=7.453,P<0.00714)。
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2.山泉水与医院污水污染地表水分离菌株比较(SPRvs


第三军医大学硕士学位论文 HEPS)

AntibiotiCS

SPR与HEPS分离菌耐药率比较

山泉水与医院污水污染地表水分离菌株进行比较发现,前者对Cef.Nor、GM、 Ami和SM的耐药率及对所选十种抗生素都耐受的菌株比例显著低于后者,对其它抗 生素的耐药率未见显著性差异(+Cef:X2=8.061,P<0.00455;Nor:x2=7.555,P<0.00625;


GM:x2=30.168.P<O.00227;Ami:z2=33.993,P<0.00227;SM:x2=18.489,P<0.00227; Ten:x2----7.597,P<0.00625)。

3.山泉水与污水处理厂污水分离菌株比较(SPR VS

80 60 40 20 0

冀 .搦均. 霞 .窗.圜.豳.一|||.昀.量冀

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山泉水与污水处理厂污水分离菌株比较,前者对SM的耐药率显著低于后者,对


其它抗生素的耐药率未见显著性差异(+SM:X2=6.427,P<0.01250)。

4.山泉水与嘉陵江地表水分离菌株比较(SPRVS SUR)

f嘲,卤I|.酗j卤.嘏l蕾,j.圉。嘲,囫l::


P吼amp。。‘ery。ip盛k。6毒阱gen砌5拉咖

图5 SPR与SUR分离菌耐药率比较

山泉水与嘉陵江地表水分离菌株的比较,前者对Ofl、GM和SM的耐药率显著低 于后者,对其它抗生素的耐药率未见显著性差异(?Off:工2=6.876,P<0.01250;GM:工2


=6.349.P<0.01250;SM:x2=9.524,P<0.00227)。

5.农业流域与受医院污水污染地表水分离菌株比较(AGRVSHEPS)

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图6 HEPS与AGR分离菌耐药率比较

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农业流域与受医院污水污染地表水分离菌株比较发现,前者对Amp和Anti的耐 药率及对所选十种抗生素都耐受的菌株比例显著低于后者,对其它抗生素的耐药率未


见显著性差异(Amp:工2=6.285,P<O.01250;Ami:x2=13.713.P<O.00227;Ten:X2= 7.032,P<0.00833)。

6.嘉陵江地表水与农业流域地表水分离菌株比较(SURVSAGR)

曲 ∞ 柏 _【蒜苗_墨_口g聃Isog 加

0 pea amp cef cry cip


Antibiotics

图7 AGR与SUR爿>离菌耐药率比较

嘉陵江地表水与农业流域地表水分离菌株对十种受试抗生素的的耐药率均无显著


性差异(P>O.01250)。 7.嘉陵江地表水与受医院污水污染地表水分离菌株比较(SURVSHEPS)
^摹苜_芒_口墨∞Iso酲 ∞
O pen amp cef ery cip ofl

Antibiotics +:P<0.0125

图8 HEPS与SUR分离菌耐药率比较

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嘉陵江地表水与受医院污水污染地表水分离菌株比较,前者对Ami、GM和SM 的耐药率显著低于后者,对其它抗生素的耐药率未见显著性差异(+GM:x2=i0.005,


P<O.00833;Ami:x2=11.208。P<O.00833;SM:x2=6.656,P<0.00833)。

8.嘉陵江地表水与污水处理厂污水分离菌株比较(SURvs STP)

100 团STP 80

on Antibiotics

图9 SUR与FrP分离菌耐药率比较

嘉陵江地表水与污水处理厂污水分离菌株比较,前者对Anti的耐药率显著高于后 者,对其它抗生素的耐药率未见显著性差异(tAmi:x2=9.002,P<0.00313)。

9.受医院污水污染地表水与污水处理厂污水分离菌株比较(HEPS vs

Antibiotics +:P<0.0125

图10 HEPS与STP分离菌耐药率比较

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受医院污水污染地表水与污水处理厂污水分离菌株比较,前者对Nor、GM、Ami 的耐药率及对所选十种抗生素都耐受的菌株比例显著高于后者,对其它抗生素的耐药


率未见显著性差异(4 Nor:x2=12.936,P<0.00227;GM:x2=-31.640,P<0.00227;Ami:工2 =-44.462。P<0.00227;Ten:工2=8.796,P<0.00313)。

10.污水处理厂进水与出水分离菌株比较(STPi vs

一.}小百芒_口暑∞IsQE

o pea amp cef cry eip on Amibioties

图11¥TPi与STPe分离菌耐药率比较

污水处理厂进水与出水分离菌株对十种受试抗生索的耐药率均末见显著差异


(P>o.01250)。

一、水环境中耐热性大肠菌群分离与鉴定 从五类水体中用滤膜法在m.FC培养基上成功分离到162株呈蓝色菌落的菌株, 经鉴定有161株(99.4%)属耐热大肠菌群,埃希氏大肠杆菌为优势菌,占菌群总数 的90%以上。说明该方法是检测分离耐热大肠菌群特异性高、简单易行的方法。 Gelddreich和Smith等人的研究表明,当水中耐热大肠菌群密度在200cfu/100ml 以上时,就有可能分离出沙门氏菌口”,此次研究从耐热大肠菌群密度为2.1X103的畜 禽养殖地区河流水样中分离到&arizonae,符合其研究结论,表明该地区河流受到了 畜禽病原菌的污染,在该地区以耐热大肠菌群作为水体粪便污染指示菌具有重要的卫

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耐热大肠菌群密度在各水体中呈现较大差异:医院污水污染地表水和污水处理厂 污水最高(以点源性污染为主,数量级为105-106),屠宰场下游地表水和嘉陵江地表


水居其次(同时受到点源性污染和非点源性污染,数量级为103 104),山泉水和畜禽 养殖地区地表水最低(以非点源性污染为主,数量级102~103)。该结果提示:污水处

理厂生活污水的处理对微生物的去除效率较低,处理后仍带有高浓度微生物的大量生 活污水是重庆市自然水环境微生物污染的最主要来源,该结果与Isabelle George的研 究结果相似【『H】。本研究所选采样点的医院污水并未按照《医院污水排放标准》进行严 格消毒处理,医院污水也是该地区自然水环境中微生物污染的重要污染源。屠宰场和


养殖场污水、污物未经处理而直接排放或用作粪肥后经地表径流进入水体是农业地区 水环境微生物污染的主要途径。

对水环境微生物污染,应从源头抓起,采取针对性的控制措施。应高度重视医院 污水对环境的危害性,对医院污水的处理进行严格监控管理,保证医院污水设施的正 常运行,使排放污水符合《医院污水排放标准》,避免医院污水对环境造成微生物污染。 要大力推广现行的堆肥、沼气厌氧发酵等技术,试点利用新开发的新技术(如深槽好 氧发酵技术等)对集约化养殖场粪便进行无害化处理,减少农业养殖对水环境的污染。 长期以来,污水处理厂首要的目的是去除污水中的悬浮颗粒和有机物,对微生物的去 除并没有进行特别的要求。随着人口的增长和水资源的紧缺,越来越多的地区将面临 着回收水的利用问题,对污水处理设施微生物去除效率的评价和要求也显得日益重要。 因此,应逐步建立起以聚合氯化铝混凝沉淀结合快砂滤、臭氧氧化、紫外线消毒、和 高级氧化处理程序(advanced oxiation process,AOP)等技术,对二级污水处理厂出水 进行深度处理。也可因地制宜,利用人工湿地(constructed wetlands,CW)这种投资 少、效能高的污水处理设施,在无条件建造污水处理厂的地区进行生活污水和农业养 殖场污水的无害化处理,并对二级污水处理厂出水进~步处理。 二、重庆市水环境中耐热性大肠菌群抗生素耐药性 本课题研究结果表明,重庆市人类与动物抗生素的滥用已经造成了水环境微生物 对抗生素的普遍耐药。分离自不同水体的162株菌对人畜常用十种抗生素的耐药率达 到22.2―100%,多重耐药率为98.1%,对青霉素的耐药率为100%,说明耐热性大肠菌 群对青霉素具有固有耐药性。Guardabassi对污水水样和水产养殖厂水样分离的不动杆


菌∽cinetobacter spp.)的研究结果表明,分离菌株对抗生素的耐药率为:氯霉素50%,

氨苄青霉素27%,氧四环素26%,磺胺嘧啶26%,庆大霉素7%,对环丙沙星全部敏 感【32】。Mulamattathil报道了从密闭网组化水系分离的273株耐热大肠菌中93%对一 种以上抗生素具有耐药性,对各受试抗生素的耐药率分别是:氨卡青霉素83.5%,头

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孢菌素75.5%,磺胺嘧啶74.4%,链霉素39.6%,四环素33.8%t 291。Madsol的研究显 示,分离自污水排放口上下游的肠杆菌中对四环素、beta-I勾酰胺类抗生素和萘啶酸的 耐药率分别是24_3%、20.5%和20%【2”。由此可见,本次研究的耐热性大肠菌分离株 耐药率高于国外的相关研究结果,国内还未见类似报道。 Tischler发现加拿大野鹅粪便分离菌株大多对链霉素,红霉素,万古霉素,四环 素和青霉素具有强耐受性[491;Sherley等对分离自澳大利亚野生哺乳动物的946株肠杆 菌的抗生素耐药性的分析结果显示:近100%的细菌对抗革兰氏阳性菌的抗生素耐药, 80%的细菌对一种或一种以上的抗革兰氏阴性菌的抗生素耐药Ⅲ】;Gilliver报道了英 国西北部野生啮齿类动物肠道菌群抗生素耐药性的普遍存在Ⅲl。根据以上报道可知: 在很多国家,野生动物体内微生物耐药性已普遍存在。本次研究从受人类和农业污染 影响极低的山泉水分离的25株细菌中有3株对两种抗生素耐受,其余22株均具多重 耐药性。该结果间接提示:重庆地区野生动物肠道微生物耐药性可能已普遍存在。 Sherley的研究发现野生动物分离菌对合成抗生素甲氧苄啶和萘啶酸具有耐药性,推测 野生动物对抗生素的暴露很可能来自于人类【7 51。 对不同水体耐热性大肠菌群两两比较发现:山泉水中分离株对十种抗生素的耐药 率显著低于其它水体分离株,主要原因可能是由于这些菌株的宿主的(多为野生动物) 抗生素暴露水平低于人类和饲养动物。受医院污水污染地表水分离菌株耐药率显著高 于其它各种水体,这是因为高水平抗生素暴露的病人体内耐药性微生物及其耐药因子 随污水排放入地表水,也可能是由于医院污水低浓度的残留抗生素排入地表水后对其 微生物群落产生了耐药性选择压力。污水处理厂进水和出水分离菌株对十种抗生素的 耐药性没有显著性差异,提示污水处理过程对微生物耐药性并无显著影响,这与 Guardabassi等对三级污水处理对微生物耐药性影响研究的结果一致【341。污水处理厂污 水中耐药性微生物的排放很可能是公共卫生的重大隐患,这进一步表明了污水处理厂 应采取有效的深度处理措施防止耐药性微生物向外环境的传播。 分析所有耐热性大肠菌群对十种常用抗生素的耐药谱发现:不同水体微生物的耐 药谱各不相同,它们对Off、Nor、GM、Ami和SM五种抗生素的耐药率有显著性差 异。受不同污染源污染的水体中微生物的宿主不相同,不同宿主对抗生素的暴露水平 与种类的差异使得其体内微生物受到不同的耐药性选择压力、产生不同的耐药谱。抗 生素耐药谱分析(antibiotic

analysis,ARA)正是以此为理论基础在近年发展起

来的一种微生物源追踪技术(microbial

tracking,MST)陋51。本次研究筛选出不同

水体微生物对其耐药性具有显著差异的Off、Nor、GM、Ami和SM五种抗生素,为 进一步深入研究重庆地区耐热大肠菌群各宿主(如人、各种家禽家畜)粪便及各种水

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体中耐热性大肠菌群的抗生素耐药性并建立相应数据库提供了线索,给在重庆地区以

ARA作为手段进行MST研究奠定了初步的研究基础。 水环境微生物耐药性形成的原因可能有:人和动物体内耐药菌及耐药因子向水环 境的扩散,水环境中低浓度的抗生素对菌群产生的耐药性选择压力[3”。虽然水环境微 生物耐药性的机制并不清楚,但它极有可能是公共卫生和生态环境的一大隐患。耐药 微生物及耐药因子可经多途径侵入机体,将耐药性传递给体内致病菌,加大感染性疾


病的治疗难度‘50’51,5 21。根据本课题研究结果及国外类似文献报道来看,在水质微生物

监测中加入抗生素耐药性分析有重要意义。它不仅会提高水质微生物监测的预警效能, 还能为深入研究水环境中微生物耐药性的形成机理和ARA在MST的应用提供长期而

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