当抗原abo血型抗体效价都处于未知状态 如何确定效价

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OD值表示抗体效价科学吗?急急急急
问题如题,请问抗体效价如何表示,我一开始是准备直接倍比稀释,得出抗体效价后直接表示的,但是问题来了,组内的抗体效价差异很大,比如说我用2的倍比稀释,最后得出的效价可能是:16 64 32等等,不好进行组间比较,我查阅了文献,有的文章说可以直接将血清稀释到一定的倍数,测定OD值,用OD值进行表示
那么我的问题是:用OD值表示抗体效价对具体的稀释倍数有要求吗?这样的表示方法科学吗???
打个比方说我做10倍,100倍,1000倍稀释的时候,OD值可能都处于1.6-2.0之间啊,这该怎么确定呢,而且每组可能都有超过5个以上的数据,就会有5个以上的结果,组间比较效价差异的时候就会变得很困难的,所以我在看文献的时候看到有的就稀释到比如说2000倍,测定OD值分析差异,实验组的OD数据差不多在0.5左右,所以我奇怪对稀释度有没有具体要求的?还是必须保证OD在0.5左右的
我是第一次做抗体这块的 所以很多方面都不清楚,但是我看到论文中很多表示抗体滴度都是稀释一定倍数,OD0-1之间的,所以心存疑惑了
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扫描下载送金币本人看了很多论坛和资料,大多的elisa都是测未知抗原和抗体,因为我是从植物内混合蛋白质中测出目的蛋白的浓度,我们目前有需检测蛋白的相关抗原、自己免疫的多克隆的一抗和HRP-标记的二抗,是不是我们包被的时候用包被液倍比稀释抗原,并将需检测的蛋白也按照设定的1:20、1:40、1:80、1:160稀释后一起包被过夜?我在想我是不是可以认定我们有的这个抗原则为我们的标准品,然后来检测我们的蛋白.不甚感激~我们目前的设计流程是:1.包被抗原和待测蛋白 4℃过夜(抗原按照倍比稀释加入包被液为:10,5,2.5,1.25,0.625,0.25,0 单位是μg/ml 蛋白1:100稀释都加入)2.第二天弃液,PBST洗板3次,拍干3.每孔加入3%BSA封闭至满孔,37℃湿盒湿育 2h4.洗版,5.每孔加入稀释好的一抗(1:80)100μl,37℃湿盒湿育 2h6.洗版,7.每孔加入辣根酶标记的IgG(1:ul,37℃湿盒湿育 1h8.9.每孔加入100ul底物反应液(现用现配)暗反应15min10.加入50μl 2MH2SO4 停止反应上机在450nm下测标曲并读值.目前的问题是:如何能确定我们蛋白的最佳稀释浓度,和一二抗的最佳工作浓度?
具体做法要看你的实验设计,是要做夹心ELISA还是间接ELISA. 看你的描述应该是夹心法: 包被单抗到孔板上,然后加抗原标准品和未知样品孵育, 然后加HRP标记的二抗,最后TMB显色.所以你第一步应该是包被液稀释你的一抗,过夜包被,第二天BSA做封闭, 然后测样品.建议楼主动手前先了解一下基本的ELISA技术知识. 请用google搜索引号内的内容: "Technical Guide for ELISA filetype:pdf" 补充: 你这种方式是直接ELISA,也是最不靠谱的一种方法. 如果你们坚持这样做的话...1. 标准品和样品的最佳稀释度,这个得做实地测试,看看待测蛋白的信号是个什么水平,再做调整2. 一二抗的稀释度, 你需要做一个滴定, 比如,给定一定量的标准品,测试1:1000 到1:10000 的一抗和二抗组合,看看那个组合信号高, 同时背景低.
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