余杭中医院
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为什么术中术后要做两次病理切片
通常，外科医生在术中要确定肿块切除范围时，需要切取一些组织送去给病理医生做初步判断。判断的焦点在组织的良恶性之分。如果组织明显表现良性，手术切除范围可以小些，以免造成不必要的创伤；如果组织表现倾向恶性，哪怕只是怀疑未能确定，一般都采取&清扫&方式，即将手术范围相对扩大一些，以期彻底清楚病变组织，不留后患。
很多病人和家属不理解，为何做完手术后，还要等待另一个病理诊断？为何会出现最后石蜡切片的病理诊断与当初术中的冰冻诊断不一样？是医生诊断有误吗？不是的。
与石蜡切片相比，冰冻切片有一定的局限性。其准确率一般只在95％左右。冰冻切片也叫术中快速冰冻切片。病理工作者将手术医生术中切除的病变组织，在冰冻切片机中迅速冷冻后制成组织切片，经过快速苏木素伊红染色，由病理专家即时在显微镜下观察，短时间做出判断。快速冰冻病理报告，为手术医生决定下一步手术方案和手术范围提供了重要的参考依据。整个过程一般需要在半小时内完成。
而石蜡切片一般需要2～3天才能完成。因为冰冻切片中组织细胞形态表现质量较差、冰冻切片取材有限、病变组织在冰冻过程中不可避免地形成结晶影响了病理专家的判读，以及组织处理和诊断时间紧迫等因素，对冰冻切片诊断的准确性有一定影响。有时冰冻切片与最终石蜡切片相差甚远，也存在冰冻切片与最终石蜡切片诊断不相符的可能。所以，最后的病理诊断应以石蜡切片诊断结果为准。但冰冻切片为术中确定手术方案提供了关键性依据，是整个诊疗过程中不可缺少的重要手段。
由此可见，我们不能笼统地说冰冻切片与石蜡切片哪个更可信，因为两者处于诊疗过程中的两个不同环节，在不同的阶段有其各自的价值，都需要参考。（张桂珍）
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超薄切片技术简介
超薄切片技术简介
电镜是利用电子束作为成像光源,由于普通透射电镜电子束穿透能力很弱，无法穿透1um厚度的薄片,所以必须把标本切成厚度小于0.1um以下的薄片才能适用，这种薄片称为超薄切片。常用的超薄切片厚度是50-70nm。
& && &在透射电镜的样品制备方法中，超薄切片技术是最基本、最常用的制备技术。超薄切片的制作过程基本上和石蜡切片相似，需要经过取材、固定、脱水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步骤。
& && &一、 取材的基本要求
& && &组织从生物活体取下以后，如果不立即进行适当处理，会由于细胞内部各种酶的作用，容易出现细胞自溶现象；同时,离开机体的组织由于细胞缺血缺氧,导致细胞代谢紊乱而出现膜性结构的损伤,最终导致人为假象的产生。此外，还可能由于组织干燥脱水、微生物污染等使细胞的超微结构遭受破坏。因此，为了使细胞结构尽可能保持生活时的状态，最好是在动物血流未断、呼吸未停之前进行取材,取材时必须要做到快、小、冷、准等四大基本要求：
& && &快：即取材动作迅速，组织从活体取下后应在最短时间内 (争取在1分钟内) 投入（2.5%—4%）戊二醛固定液中进行固定。
& && &小：所取组织的体积要小，一般不超过1mm×1mm×1mm。也可将组织修成1mm×1mm×2mm大小长条形。因为固定剂的渗透能力较弱，组织块如果太大，块的内部将不能得到良好的固定,从而影响细胞超微结构的保存。
& && &冷：所用的固定液、操作工具要预先冷藏，操作时环境温度最好在低温(0℃～4℃)下进行，以降低酶的活性，防止细胞自溶。
& && &准：取材部位要准确，即各组实验动物必须取材在同一脏器的同一位置，这样才能有较可信的比较。
& &&&此外，还要避免机械损伤，解剖器械应锋利，在修小块的时候最好用崭新的剃须刀片，操作宜轻，避免牵拉、挫伤与挤压，最好采用“双刀拉锯法”，具体操作如下：
& & 准备一块蜡板（蜡板可以用病理切片石蜡融化在培养皿中冷却后即可使用，同时在蜡板的下方放一些碎冰块或冰袋以适量降低固定液温度。）并在其上 滴几滴预冷的固定液，将取出的组织放在固定液中，用两片新的、锋利的刀片（最好是剃须刀片）交叉成“X”形，把组织放在两把刀的交叉口下，一把刀作为固定组织用，另一把刀当切割刀以“拉锯式”将组织切下并修小，然后用牙签或镊子轻轻地将组织块移至盛有冷的固定液的小瓶中。如果组织带有较多的血液和组织液，应先用缓冲液或固定液洗几遍，然后再切成小块固定。
& && &二、固定
& && &固定的目的是尽可能使细胞中的各种细胞器以及大分子结构保持生活时的状态，并且牢固地固定在它们原来所在的位置上。固定的方法有物理法和化学法两大类。物理的方法系采用冰冻、干燥、微波等手段来保持细胞结构；化学的方法是用一定的化学试剂来固定细胞结构。现通常使用化学方法进行固定，有时用物理-化学双固定。
& && &常用固定剂
& && &1、四氧化锇 (osmium&&tetroxide，)是一种强氧化剂，与氮原子有较强的亲和力，因而对于细胞结构中的蛋白质成分有良好的固定作用。它还能与不饱和脂肪酸反应使脂肪得以固定。此外，四氧化锇还能固定脂蛋白，使生物膜结构的主要成分磷脂蛋白稳定。它还能与变性DNA以及核蛋白反应，但不能固定天然DNA、RNA及糖原。四氧化锇固定剂有强烈的电子染色作用，用它固定的样品图象反差较好。锇酸常用浓度为1%，固定时间视环境温度而有所不同，一般在夏秋为1小时，冬春为1.5—2.0小时。缺点是固定时间过长容易造成组织发脆，不容易切片。
& && &2．戊二醛 (glutaraldehyde&&C5H8O2)，&&戊二醛的优点是对糖原、糖蛋白、微管、内质网和细胞基质等有较好的固定作用，对组织和细胞的穿透力比四氧化锇强，还能保存某些酶的活力，长时间的固定(几周甚至1～2个月)不会使组织变脆。缺点是不能保存脂肪，没有电子染色作用，对细胞膜的显示较差。
& && &组织块固定常规采用戊二醛—锇酸双重固定法。分预固定和后固定，中间用磷酸缓冲液或相应的缓冲液漂洗。前固定用2.5%戊二醛固定2小时以上、后固定用1%锇酸固定液固定1～2小时，pH7.2～7.4。固定完毕，用缓冲液漂洗30分钟后进行脱水。
& &&&此外，还可以用福尔马林溶液、高锰酸钾溶液固定。
& &&&三、脱水
& &&&目前我们使用的包埋介质大多是非亲水性的物质，为了保证包埋介质完全渗入组织内部，必须事先将组织内的水分驱除干净，即用一种和水及包埋剂均能相混溶的液体来取代水，常用的脱水剂是乙醇和丙酮。急骤的脱水会引起细胞的收缩，因此，脱水应缓慢地梯度地进行。下面以丙酮脱水为例：50%丙酮15分钟，70% 丙酮15分钟，80% 丙酮15分钟，90%丙酮15分钟，100%丙酮20分钟(分二次进行)。游离细胞可适当缩短脱水时间。过度脱水不仅引起更多物质的抽提，而且会使细胞皱缩变形、超微结构破坏、同时引起样品发脆，造成切片困难或无法切片。& &
& && &四、浸透和包埋
& && &(一) 浸透
& && &浸透就是利用包埋剂渗入到组织内部取代脱水剂，这种包埋剂在单体状态时(聚合前)为液体，能够渗入组织内，当加入某些催化剂，并经加温后，能聚合成固体，以便进行超薄切片。目前常用的包埋剂是环氧树脂(epoxy&&resin)。环氧树脂是一类高分子聚合物，它的分子中含有两种反应基团，即环氧基和羟基。当加入酸酐类时，树脂分子中的羟基能与酸酐结合，形成分子间的横桥连接，这种起横桥式连接作用的交联剂叫做硬化剂，它们参与交联反应，并被吸收到树脂链中。常用的硬化剂有十二烷基琥珀酸酐(或叫十二碳烯基丁二酸酐，简称DDSA)、甲基内次甲基邻苯二甲酸酐(或叫六甲酸酐，简称MNA)及顺丁烯二酸酐等。当加入胺类时，就引起末端环氧基相连，形成首尾相接的长链状聚合物。这种促进末端相接的交联剂叫做催化剂或加速剂。常用的加速剂有2,4,6－三(二甲氨基甲基苯酚)(简称DMP-30)、二乙基苯胺及乙二胺等。为了改善包埋块的切割性能，某些环氧树脂包埋剂配方中还加有增塑剂，使包埋块具有适当的韧性。常用的增塑剂为邻苯二甲酸二丁酯(简称DBP)。
& && &包埋操作： 常规将组织块包埋在多孔橡胶包埋模板中，然后置烤箱烘干，在45℃(12小时)、60℃(36小时或更长)烤箱内加温，即可聚合硬化，形成包埋块。
& && &包埋操作中应注意以下几点：(1)所有试剂要防潮，最好存放在干燥器中；(2)所用器皿应烘干；(3)配包埋剂时，每加入一种试剂要搅拌均匀；(4)包埋时动作要轻巧，防止产生气泡；(5)皮肤尽量不要接触包埋剂，以免引起皮炎；(6)盛放过包埋剂的容器要及时用丙酮清洗干净；（7）操作过程最好在通风柜中进行。
& && &五、超薄切片
& &&&(一) 超薄切片前的准备工作
& &&&1．修块
& & 一般用手工对包埋块进行修整。将包埋块夹在特制的夹持器上，放在解剖显微镜下，用锋利的刀片先削去表面的包埋剂，露出组织，然后在组织的四周以和水平面成45度的角度削去包埋剂，修成锥体形。&&
& && &2．半薄切片定位
& && &利用超薄切片机切厚度为1μm-5μm的切片，称半薄切片。将切下的片子用镊子或小毛刷转移到干净的事先滴有蒸馏水的载玻片上，加温，使切片展平，干燥后经甲苯胺蓝染色，光学显微镜观察定位。如果半薄切片做得好，比一般石蜡切片更能观察到细微结构，效果比石蜡切片要好一些。
& &&&半薄切片进行光学显微镜观察的目的：(1) 定位：通过光学显微镜观察，确定所要观察的范围，然后保留要用电镜观察的部分，修去其余部分。(2)便于对同一组织的同一部位进行光学显微镜和电镜的对比观察。半薄切片定位以后，要对包埋块作进一步的修整。通常将块的顶端修成金字塔形，顶面修成梯形或长方形(最好是梯形)，每边的长度为0.2mm～0.3mm。
& && &3．制刀
& && &超薄切片使用的刀有两种：一种是玻璃刀，另一种是钻石刀。由于玻璃刀价格便宜，使用者较多。制刀用的玻璃为硬质玻璃，有一定的规格，厚度为5mm～6.5mm。
& && &玻璃刀用专用制刀机制作。制好玻璃刀后，要围绕刀口制作一只水槽，以便使超薄切片漂浮在水面上。水槽有树胶水槽和胶布水槽两种。树胶水槽有固定的形状，可反复使用。胶布水槽是临时用胶布或专用塑料条制作的。装好水槽后，用熔化的石蜡封固接口，防止漏水。
& && &4．载网和支持膜
& && &4.1 载网
& && &电镜中使用的载网有铜网、不锈钢网、镍网等，一般常用铜网。载网为圆形，直径3mm。网孔的形状有圆形、方形、单孔形等。网孔的数目不等，有100、200、300目等多种规格，可根据需要进行选择。
& && &4.2 支持膜的制备
& && &挑选并清洗好载网之后，要在载网上覆盖一层薄膜，这层薄膜称支持膜，厚度为10nm～20nm。对支持膜的要求是透明无结构，并能承受电子束的轰击。常用的支持膜有火棉胶膜及聚乙烯醇缩甲醛膜(Formvar膜)，一般采用后者。
& && &(二) 超薄切片
& && &超薄切片需用超薄切片机进行。根据推进原理不同，将超薄切片机分为两大类：一类是机械推进式切片机，用微动螺旋和微动杠杆来提供微小推进；另一类是热胀冷缩式切片机，利用金属杆热胀或冷缩时产生的微小长度变化来提供推进。
& && &超薄切片的步骤包括：(1)安装包埋块；(2)安装玻璃刀；(3)调节刀与组织块的距离；(4)调节水槽液面高度与灯光位置；(5)调节加热电流及切片速度，切片；(6)将切片捞在有支持膜的载网上。
& && & 六．超薄切片的染色
& && & 未经染色的超薄切片，反差很弱。因此，要进行染色处理，以增强样品的反差。一般是用重金属盐与组织细胞中某些成分结合或被组织吸附来达到染色的目的。重金属的原子对电子束形成散射，从而提高图象的反差。常用的染色剂有醋酸铀和柠檬酸铅（PH值在11左右）。染色方法有两种：
& && &1．组织块染色
& && &在脱水至70%乙醇或丙酮时，将组织块放在用70%乙醇或丙酮配制的饱和醋酸铀溶液中，染色时间2小时以上，或在冰箱中过夜。
& && &2．切片染色
& && & 预先取一个清洁的培养皿，将石蜡溶解制作成蜡板，然后滴数滴染液于蜡板上，用镊子夹住载网的边缘，把贴有切片的一面朝下，使载网浮在液滴上，盖上培养皿，染色10～20分钟。载网从染液中取出后，必须尽快用双蒸馏水清洗干净。在染色过程中，铅染液容易与空气中的二氧化碳结合形成碳酸铅颗粒，而污染切片。因此，在保存和使用染液时，要尽量减少与空气的接触。为防止铅沉淀污染，可在培养皿内放置少许氢氧化钠，以吸收空气中的二氧化碳。
& &&&七、电镜观察、拍片、记录等。
& && &每个电镜观察者必须首先准备好相应资料，熟悉所要观察组织细胞的超微结构和超微病理变化特点。观察时做好观察记录，选好范围拍片，准确记录底片号码及相应内容，最好在电脑中作好备案工作。如果使用CCD系统，则遵照CCD操作程序进行，并在观察后作好图片的拷贝或刻录工作。
& &&&下面简单介绍电镜样品制作流程，供大家参考：
& && &1、透射电镜样品制作操作流程： 取材——漂洗（生理盐水）——前固定（2.5%戊二醛，4&C冰箱2小时以上）——漂洗（0.1M 磷酸缓冲液，3次，45分钟）——后固定(1%锇酸1小时左右)——漂洗（0.1M 磷酸缓冲液，3次，45分钟）——块染（1%醋酸铀2小时）——梯度脱水（50%、70%、80%、90%、100%丙酮各15分钟， 100% 2次，各10分钟）——浸透（丙酮：包埋液=1：1，37 &C烘箱2小时；丙酮：包埋液=1：4， 37&C烘箱过夜；纯包埋液45&C烘箱2小时）——包埋聚合（45&C烘箱3小时，65&C烘箱48小时）。
& && & 2、扫描电镜样品制备操作流程：取材（做好样品观察面的标志）——漂洗（生理盐水或缓冲液）——固定（2.5%戊二醛2小时以上）——漂洗（0.1M磷酸缓冲液，3次，45分钟）——后固定（1%锇酸，2小时）——脱水（ 50%、70%、80%、90%、95%各15分钟，换醋酸异戊酯15分钟或叔丁醇15分钟）——干燥（零界点干燥或冷冻干燥）——镀膜（真空镀膜仪或离子溅射仪）
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我是外行，想问一下玻璃刀能磨吗？
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& & 目前玻璃刀是用专用制刀机制作的，而且是一次性的，现做现用。
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请问您是否做过免疫电镜？我试做过几次，但效果都不是很理想。
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:em19: 不好意思，我还没做免疫电镜，要想了解免疫电镜，可以向上海第二军医大学、上海第二医科大学、河北医科大学（石家庄）等高校电镜室了解，因为他们的免疫电镜技术较成熟，我们准备要做免疫电镜，因为免疫电镜技术在医学科研中的应用越来越广。另外，还准备与分子生物学合作开展原位杂交电镜技术，这方面技术在国内还是处于起步阶段。目前我们还是以常规电镜技术为主，其中以科研电镜实验居多，在临床诊断方面主要以肾脏病为主，同时在肝脏、肺、血液、胃肠道、肌肉、皮肤、妇科等疾病诊断方面也逐步开展。至于电镜收费问题，在我国不同省份其标准也有很大差异，沿海地区比较高，一般每例200—300元不等，而内地一般在每例100—200元不等。对于科研标本的收费，则视本单位的实际情况而定。
& & 电镜一般很难赢利的，主要原因是1、制作过程较长（一般要一周时间）2、观察时间长（平均一例30分钟）3、折旧费相对较高（200万元一台，使用10年，每年20万，如果每例收200元，一年要做1000例才能够本）4、相对于光镜病理标本来说，电镜标本数量较少。
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& &:em02:&&很高兴大家对本栏目的支持，扫描电镜和透射电镜的区别，简单地说就是扫描电镜观察的是物体表面以及断面的超微结构，具有三维立体感，有的扫描电镜带有能谱分析系统，可以对材料进行分析，在材料、矿产等领域有广泛的应用；而透射电镜观察的是物体某个切面的内部的超微结构，二者可以起到互补作用，尤其在生命科学研究中的作用已经被人们所重视。
& & 如果要了解电镜的一些情况，可以看一些电镜有关的书籍如《电子显微镜术在临床医学中的应用》、《电镜诊断学》、《超微病理基础》、《扫描电镜技术》等。 :em09:&&
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我们也做免疫电镜。不过目前电镜坏老。呵呵
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& &楼上的，你做过哪些方面的免疫电镜，能谈谈吗？好让我学习学习，在此谢了先。
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是呀我们的电镜也总是坏 :em06: 自从上次坏了再也没修好:em10: 本来想学习一下但是看样是不行 :em06:&&:em13:&&
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请问如果我想将同一份标本分别作光镜和电镜固定，等光镜结果出来后再决定是否做电镜检查，那电镜标本应如何保存。}